OBJETIVO: Investigar as alterações histopatológicas produzidas por um modelo de trauma craniano fechado por queda de peso em ratos. MÉTODOS: Utilizando uma plataforma para produção de lesão craniana fechada controlada por queda de peso com energia pré-definida e conhecida, 25 ratos Wistar machos (Rattus norvegicus albinus) foram divididos em cinco grupos iguais que receberam níveis diferentes de energia de impacto craniano: G1, G2, G3 e G4 com 0,234J, 0,5J, 0,762J e 1J respectivamente e G5 (Sham). Sob analgesia, cada grupo teve seus encéfalos coletados e processados para análise histopatológica por microscopia óptica convencional. RESULTADOS: Houve maior número de neurônios lesados em animais do grupo 4, mas morte neuronal também pôde ser constatada nos animais do grupo 5. Hemorragias parenquimatosas foram mais frequentes nos animais do grupo 4 e o inchaço cerebral citotóxico e congestão vascular foram mais intensos neste grupo. CONCLUSÃO: Os achados à análise histopatológica permitem observar alterações típicas do trauma craniano e estas guardaram proporção direta com a energia do impacto.

PURPOSE: To study histopathological findings due to a model of closed head injury by weight loss in rats. METHODS: A platform was used to induce closed cranial lesion controlled by weight loss with a known and predefined energy. 25 male Wistar rats (Rattus novergicus albinus) were divided in five equal groups which received different cranial impact energy levels: G1, G2, G3 and G4 with 0.234J, 0.5J, 0.762J and 1J respectively and G5 (Sham). Under the effect of analgesia, the brain of each group was collected and prepared for histopathological analysis by conventional optic microscopy. RESULTS: It was observed greater number of injured neurons in animals of group 4, however neuronal death also could be noticed in animals of group 5. Intraparenchymal hemorrhages were more frequent in animals of group 4 and the cytotoxic brain swelling and vascular congestion were more intense in this group CONCLUSION: The histopathological analysis of these findings allowed to observe typical cranial trauma alterations and these keep close relation with impact energy.

OBJETIVO: Investigar o uso de um modelo de trauma craniano experimental em ratos. MÉTODOS: O equipamento, já descrito na literatura e sob discretas adaptações, contitui-se de uma plataforma para produção de lesão craniana fechada controlada por queda de peso com energia pré-definida e conhecida. 25 ratos Wistar machos (Rattus norvegicus albinus) foram divididos em cinco grupos iguais que receberam níveis diferentes de energia de impacto craniano: G1, G2, G3 e G4 com 0,234J, 0,5J, 0, 762J e 1J respectivamente e G5 (Sham). Sob intensa analgesia, cada grupo foi avaliado clinicamente em uma seqüência de intervalos e tiveram seus encéfalos removidos para análise patológica. RESULTADOS: Alterações clínicas importantes (convulsões, bradicardia, bradipnéia e posturas anormais) e patológicas focais (hematomas e hemorragias) guardaram proporção com a intensidade do impacto. Nenhuma fratura foi observada e o grupo 4 teve 80% de mortalidade. CONCLUSÃO: O modelo animal para trauma craniano experimental por queda de peso é uma alternativa de baixo custo e fácil reprodução, gerando alterações clínicas e patológicas compatíveis com os objetivos de estudos em cirurgia experimental para abordagem do trauma craniano em ratos.

PURPOSE: To investigate the function of an experimental cranium trauma model in rats. METHODS: The equipment, already described in the literature and under discreet adaptations, is composed by a platform that produces closed head impact controlled by weight drop with pre-defined and known energy. 25 Wistar male rats (Rattus norvegicus albinus) were divided into five equal groups that received different quantities of cranial impact energy: G1, G2, G3 and G4 with 0,234J, 0,5J, 0,762J and 1J respectively and G5 (Sham). Under intense analgesia, each group was evaluated clinically in a sequence of intervals and had their encephalon removed for pathologic analysis. RESULTS: Important clinical alterations (convulsions, bradycardia, bradypnea and abnormal postures) and focal pathologic (hematomas and hemorrhages) kept proportion with the intensity of the impact. No fracture was observed and the group 4 had 80% mortality rate. CONCLUSION: The experimental cranium trauma animal model by weight drop is an alternative of low cost and easy reproduction that allows evaluating clinical and pathological alterations in accordance with studies in experimental surgery aims for new traumatic brain injury approach in rats.

OBJETIVO: Apresentar modelo de equipamento para anestesia inalatória em ratos, com melhor controle do fluxo, das perdas de anestésico na indução, da manutenção e da recuperação anestésica. MÉTODOS: O equipamento é constituído por compressor de ar com saída dupla, câmara de vidro fechada para indução, reservatório de vidro para o agente anestésico, máscara de inalação pediátrica, torneira de três vias, conexão em "Y" e sondas uretrais. Trezentos ratos Wistar (Rattus norvegicus albinus) foram anestesiados por via inalatória. Os parâmetros avaliados foram: viabilidade do equipamento, tempo de cada fase, reflexo corneano, tônus muscular e movimentos respiratórios na indução e na manutenção anestésica, além do volume de anestésico. RESULTADOS: A média do tempo gasto na indução anestésica foi de 7,3 minutos. A média do tempo de recuperação anestésica foi de 6,4 minutos. A média do volume de éter utilizado foi de 6,5 ml/h. Não foram observadas neste experimento morte dos animais, aumento excessivo de secreção traqueobrônquica ou interrupção da operação por superficialização anestésica. CONCLUSÃO: O equipamento proposto é prático, possui baixo custo e permite o controle adequado dos parâmetros de controle da anestesia durante todo o procedimento, tornando a anestesia inalatória em ratos segura e praticamente isenta de complicações.

PURPOSE: To introduce a model of equipment for inhalation anesthesia in rats that offers better control of both flow and losses of ether during induction, maintenance, and recuperation. METHODS: The equipment consists of an air compressor with two outlets, a closed glass induction chamber, a glass reservoir for the anesthetic agent, a pediatric inhalation mask, a three-way stopcock, a Y-connector, and urinary catheters. Three hundred Wistar rats (Rattus norvegicus albinus) were given inhalation anesthesia. The evaluated parameters were equipment operation, duration of each phase of anesthesia, corneal reflex, muscular tonus, respiration during induction and maintenance, and volume of anesthesia. RESULTS: The average time taken for induction was 7.3 minutes; the average anesthetic recuperation time was 6.4 minutes. The amount of anesthetic used varied according to the weight of the animal, with the average volume of ether used being 6.5ml/hour. The availability of oxygen (room air) decreased the recuperation time and averted both respiratory depression and insufficient depth of anesthesia. CONCLUSION: The proposed equipment is practical, inexpensive, and allows for satisfactory control of anesthetic parameters during the entire procedure, making inhalation anesthesia in rats safe and essentially complication free.