Abstract Diagnosis is crucial for controlling giardiasis. We determined the prevalence and genetically characterize isolates of Giardia duodenalis of children and dogs from rural communities in northeastern Brazil. G. duodenalis cysts were concentrated by centrifugal flotation/sedimentation. Molecular characterization was carried out using the loci ssu-rRNA, bg, tpi, and gdh. By parasitological techniques, Giardia spp. infection was detected in 72/192 children (37.5%; 95% CI: 30.6%-44.7%) and 24/139 dogs (17.3%; 95% CI: 11.4%-24.6%). By molecular analysis, infection was detected in 60/141 children (42.5%; 95% CI: 34.3%-51.2%) and 26/92 dogs (28.3%; 95% CI: 19.4%-38.6%). The total prevalence of giardiasis was 54.9% in children (106/193; 95% CI: 47.1%-61.6%) and 32.9% in dogs (47/143; 95% CI: 25.2%-41.2%). Zoonotic assemblages A and B of G. duodenalis were detected in children, and assemblage E of G. duodenalis was detected in one child and two dogs. Parallel use of parasitological and molecular techniques proved to be a more effective strategy for detecting giardiasis in children and dogs from endemic areas. Brazil G flotationsedimentation flotation sedimentation flotation/sedimentation ssurRNA, ssurRNA ssu rRNA, rRNA ssu-rRNA bg tpi gdh spp 72192 72 192 72/19 37.5% 375 37 5 (37.5% 95 CI 30.6%44.7% 306447 30.6% 44.7% 30 6 44 7 30.6%-44.7% 24139 24 139 24/13 17.3% 173 17 3 (17.3% 11.4%24.6%. 114246 11.4% 24.6% . 11 4 11.4%-24.6%) analysis 60141 60 141 60/14 42.5% 425 42 (42.5% 34.3%51.2% 343512 34.3% 51.2% 34 51 2 34.3%-51.2% 2692 26 92 26/9 28.3% 283 28 (28.3% 19.4%38.6%. 194386 19.4% 38.6% 19 38 19.4%-38.6%) 549 54 9 54.9 106/193 106193 106 193 (106/193 47.1%61.6% 471616 47.1% 61.6% 47 1 61 47.1%-61.6% 329 32 32.9 47/143 47143 143 (47/143 25.2%41.2%. 252412 25.2% 41.2% 25 41 25.2%-41.2%) areas 7219 72/1 37.5 (37.5 30.6%44.7 30644 306 30.6 447 44.7 30.6%-44.7 2413 13 24/1 17.3 (17.3 11.4%24.6% 11424 114 11.4 246 24.6 11.4%-24.6% 6014 14 60/1 42.5 (42.5 34.3%51.2 34351 343 34.3 512 51.2 34.3%-51.2 269 26/ 28.3 (28.3 19.4%38.6% 19438 194 19.4 386 38.6 19.4%-38.6% 54. 106/19 10619 10 (106/19 47.1%61.6 47161 471 47.1 616 61.6 47.1%-61.6 32. 47/14 4714 (47/14 25.2%41.2% 25241 252 25.2 412 41.2 25.2%-41.2% 721 72/ 37. (37. 30.6%44. 3064 30. 44. 30.6%-44. 241 24/ 17. (17. 11.4%24.6 1142 11. 24. 11.4%-24.6 601 60/ 42. (42. 34.3%51. 3435 34. 51. 34.3%-51. 28. (28. 19.4%38.6 1943 19. 38. 19.4%-38.6 106/1 1061 (106/1 47.1%61. 4716 47. 61. 47.1%-61. 47/1 (47/1 25.2%41.2 2524 25. 41. 25.2%-41.2 (37 30.6%44 30.6%-44 (17 11.4%24. 11.4%-24. (42 34.3%51 34.3%-51 (28 19.4%38. 19.4%-38. 106/ (106/ 47.1%61 47.1%-61 47/ (47/ 25.2%41. 25.2%-41. (3 30.6%4 30.6%-4 (1 11.4%24 11.4%-24 (4 34.3%5 34.3%-5 (2 19.4%38 19.4%-38 (106 47.1%6 47.1%-6 (47 25.2%41 25.2%-41 ( 30.6%- 11.4%2 11.4%-2 34.3%- 19.4%3 19.4%-3 (10 47.1%- 25.2%4 25.2%-4 11.4%- 19.4%- 25.2%-
Resumo O diagnóstico é crucial para o controle da giardíase. Foram determinadas as prevalências e as características genéticas isoladas de Giardia duodenalis, em crianças e cães de comunidades rurais do nordeste brasileiro. Os cistos de G. duodenalis foram concentrados por centrífugo-flutuação/sedimentação. A caracterização molecular foi realizada utilizando-se os loci ssu-rRNA, bg, tpi e gdh. Pelas técnicas parasitológicas, a infecção por Giardia spp. foi detectada em 72/192 crianças (37,5%; IC 95%: 30,6%-44,7%) e 24/139 cães (17,3%; IC 95%: 11,4%-24,6%). Molecularmente, a infecção foi detectada em 60/141 crianças (42,5%; IC 95%: 34,3%-51,2%) e 26/92 cães (28,3%; IC 95%: 19,4%-38,6%). A prevalência total de giardíase foi de 54,9% em crianças (106/193; IC 95%: 47,1%-61,6%) e 32,9% em cães (47/143; IC 95%: 25,2%-41,2%). Os assemblages zoonóticos A e B de G. duodenalis foram detectados em crianças, e o assemblage E de G. duodenalis foi detectado nas duas populações. O uso paralelo de técnicas parasitológicas e moleculares mostra-se uma estratégia mais eficaz para detecção de giardíase em crianças e cães de áreas endêmicas. brasileiro G centrífugoflutuação/sedimentação. centrífugoflutuaçãosedimentação centrífugo flutuação/sedimentação. flutuação sedimentação centrífugo-flutuação/sedimentação utilizandose utilizando se ssurRNA, ssurRNA ssu rRNA, rRNA ssu-rRNA bg gdh spp 72192 72 192 72/19 37,5% 375 37 5 (37,5% 95% 95 30,6%44,7% 306447 30,6% 44,7% 30 6 44 7 30,6%-44,7% 24139 24 139 24/13 17,3% 173 17 3 (17,3% 11,4%24,6%. 114246 11,4% 24,6% . 11 4 11,4%-24,6%) Molecularmente 60141 60 141 60/14 42,5% 425 42 (42,5% 34,3%51,2% 343512 34,3% 51,2% 34 51 2 34,3%-51,2% 2692 26 92 26/9 28,3% 283 28 (28,3% 19,4%38,6%. 194386 19,4% 38,6% 19 38 19,4%-38,6%) 549 54 9 54,9 106/193 106193 106 193 (106/193 47,1%61,6% 471616 47,1% 61,6% 47 1 61 47,1%-61,6% 329 32 32,9 47/143 47143 143 (47/143 25,2%41,2%. 252412 25,2% 41,2% 25 41 25,2%-41,2%) populações mostrase mostra endêmicas centrífugoflutuação centrífugoflutuação/sedimentação flutuaçãosedimentação flutuação/sedimentação 7219 72/1 37,5 (37,5 30,6%44,7 30644 306 30,6 447 44,7 30,6%-44,7 2413 13 24/1 17,3 (17,3 11,4%24,6% 11424 114 11,4 246 24,6 11,4%-24,6% 6014 14 60/1 42,5 (42,5 34,3%51,2 34351 343 34,3 512 51,2 34,3%-51,2 269 26/ 28,3 (28,3 19,4%38,6% 19438 194 19,4 386 38,6 19,4%-38,6% 54, 106/19 10619 10 (106/19 47,1%61,6 47161 471 47,1 616 61,6 47,1%-61,6 32, 47/14 4714 (47/14 25,2%41,2% 25241 252 25,2 412 41,2 25,2%-41,2% 721 72/ 37, (37, 30,6%44, 3064 30, 44, 30,6%-44, 241 24/ 17, (17, 11,4%24,6 1142 11, 24, 11,4%-24,6 601 60/ 42, (42, 34,3%51, 3435 34, 51, 34,3%-51, 28, (28, 19,4%38,6 1943 19, 38, 19,4%-38,6 106/1 1061 (106/1 47,1%61, 4716 47, 61, 47,1%-61, 47/1 (47/1 25,2%41,2 2524 25, 41, 25,2%-41,2 (37 30,6%44 30,6%-44 (17 11,4%24, 11,4%-24, (42 34,3%51 34,3%-51 (28 19,4%38, 19,4%-38, 106/ (106/ 47,1%61 47,1%-61 47/ (47/ 25,2%41, 25,2%-41, (3 30,6%4 30,6%-4 (1 11,4%24 11,4%-24 (4 34,3%5 34,3%-5 (2 19,4%38 19,4%-38 (106 47,1%6 47,1%-6 (47 25,2%41 25,2%-41 ( 30,6%- 11,4%2 11,4%-2 34,3%- 19,4%3 19,4%-3 (10 47,1%- 25,2%4 25,2%-4 11,4%- 19,4%- 25,2%-