Dez vacas multíparas, secas, foram distribuídas aleatoriamente em dois grupos de cinco animais cada. Nos dias 8 a 12 do diestro, o primeiro grupo recebeu 100 ml de anti-soro contra líquido folicular livre de esteróides (anti-LFb) produzido em ovelhas ovariectomizadas. O segundo grupo (controle) recebeu 100 ml de soro de ovelhas não-imunizadas. Seis horas após a aplicação, os dois grupos foram superovulados com FSH (18 NIH-FSH-S1 unidades) e LH (0,29 NIH-LH-S1 unidades) administrados em quantidades decrescentes durante quatro dias. Na manhã do terceiro dia, foi administrada uma dose luteolítica de cloprostenol. Duas inseminações foram realizadas 48 e 60 horas após. Os embriões foram recuperados pelo método cervical 7 dias após a primeira inseminação. Amostras de sangue foram coletadas durante todo o período experimental para determinar, por radioimunoensaio, as concentrações plasmáticas de FSH, LH e progesterona. Todas as vacas do grupo imunizado e 3 do grupo controle apresentaram mais de 2 CL. Não existiu diferença significativa (P>0,05) na taxa de ovulação entre os grupos imunizado e controle (14,4 e 9,9, respectivamente). O número de embriões recuperado não foi significativamente diferente (P>0,05) entre os grupos, embora o grupo imunizado tenha apresentado maior número de embriões transferíveis (3,4 ± 1,0 versus 0,8 ± 0,4, P<0,05). As concentrações de gonadotrofinas plasmáticas não foram correlacionadas com a taxa de ovulação ou com o número de embriões recuperados. As concentrações de progesterona plasmática foram positivamente correlacionadas (r = 0,88, P<0,01) com a taxa de ovulação. Os resultados sugerem que o anti-LFb, aplicado antes da superovulação, não reduz a variabilidade da resposta ovariana.

Ten multiparous non-lactating cows were randomly assigned to one of two groups. On days 8 to 12 after estrus, the first group was given 100 ml antiserum against steroid-free bovine follicular fluid (anti-bFF), which was produced in ovariectomized sheep. The second group (control) was given 100 ml nonimmune ovariectomized sheep serum. Six hours after injection, both groups were superovulated with FSH (18 NIH-FSH-S1 units) and LH (0.29 NIH-LH-S1 units) in a 4-day decreasing regime. On the morning of the third day a luteolytic dose of prostaglandin F2alpha analogue (cloprostenol) was given. Artificial inseminations (AI) were done 48 and 60 h later. Embryos were collected 7 days after AI by a nonsurgical method. Blood samples were taken throughout the experimental period and plasma concentrations of FSH, LH and progesterone were determined by radioimmunoassay. All cows from the immunized group, and 3 out of 5 cows in the control group, had more than 2 CL. There was no significant difference (P>0.05) in the ovulation rate between immunized and control groups (14.4 and 9.9, respectively). The number of recovered embryos was not significantly different (P>0.05) between groups, although cows immunized against bFF had a greater number of transferable embryos (3.4 ± 1.0 versus 0.8 ± 0.4, P<0.05). Plasma gonadotrophin concentrations were not correlated with either ovulation rate or number of recovered embryos. Plasma progesterone concentration was positively correlated (r = 0.88, P<0.01) to ovulation rate. Results suggested that passive immunization of cows with anti-bFF before superovulation did not reduce the variability of ovarian response.