O presente estudo teve como objetivo comparar as técnicas de imunofluorescência direta (IFD) e a microscopia de contraste de fase em solução de Sheather (MCF), para detecção de oocistos de Cryptosporidium spp. em amostras fecais de bezerros. A determinação dos limiares detecção da IFD e da MCF foi realizada utilizando cinco alíquotas de uma amostra fecal de bezerro, comprovadamente negativa para Cryptosporidium spp., adicionadas com diferentes quantidades de oocistos de Cryptosporidium parvum. Ao exame das 5 alíquotas, a IFD e a MCF apresentaram, respectivamente, limiares de detecção de 3,3x104 (duas alíquotas positivas) e 3,3x105 oocistos (1 alíquota positiva) por grama de fezes. Foram também realizadas a comparação entre a positividade obtida e uma análise semiquantitativa do número de oocistos observados por campo de microscopia, em ambos os métodos, em 300 amostras fecais de bezerros. Entre as 300 amostras, 19,7% (59/300) foram positivas pela IFD, com diferença estatisticamente significante (P=0,0098) quando comparada com a positividade obtida pela MCF, que foi de 11,7% (35/300). As amostras positivas foram submetidas à reação em cadeia da polimerase para amplificação de fragmentos da subunidade 18S do rRNA, com posterior sequenciamento dos fragmentos amplificados, o que permitiu a identificação de Cryptosporidium andersoni em 11,9% (7/59) e de C.parvum em 88,1% (52/59) das amostras. Os resultados observados comprovam que a IFD foi mais eficiente que a MCF para detecção de oocistos de Cryptosporidium spp. em amostras fecais de bezerros. (IFD , (MCF) spp bezerros bezerro parvum apresentaram respectivamente 33x104 x 3 3x104 3,3x10 duas 33x105 3x105 1 ( positiva fezes métodos 30 197 19 7 19,7 59/300 59300 59 (59/300 P=0,0098 P00098 P 0 0098 (P=0,0098 117 11 11,7 35/300. 35300 35/300 . 35 (35/300) S rRNA amplificados 119 9 11,9 7/59 759 (7/59 Cparvum C 881 88 88,1 52/59 5259 52 (52/59 (MCF 33x10 3x10 3,3x1 19, 59/30 5930 (59/30 P=0,009 P0009 009 (P=0,009 11, 3530 35/30 (35/300 7/5 75 (7/5 8 88, 52/5 525 (52/5 33x1 3x1 3,3x 59/3 593 (59/3 P=0,00 P000 00 (P=0,00 353 35/3 (35/30 7/ (7/ 52/ (52/ 33x 3x 59/ (59/ P=0,0 P00 (P=0,0 35/ (35/3 (7 (52 (59 P=0, P0 (P=0, (35/ (5 P=0 (P=0 (35 P= (P= (3 (P
This study aimed to compare the direct immunofluorescence assay (DIF) and the phase contrast microscopy in Sheather solution (PCM) for detection of Cryptosporidium oocysts in fecal samples from calves. The determination of the thresholds of detection of DIF and PCM was performed using five aliquots of a fecal sample from a calf negative for Cryptosporidium spp. oocysts, spiked with different amounts of Cryptosporidium parvum oocysts. The screening of the five aliquots revealed that the DIF and MCF showed respectively, detection thresholds of 3.3x104 (2 positive aliquots) and 3.3x105 (1 positive aliquot) oocysts per gram of fecal sample. Further analyses were accomplished in order to compare the positivity results and to determine semi-quantitatively the number of oocysts per field of microscopy, in both methods, in 300 fecal samples from calves. Among the 300 samples, 19.7% (59/300) were positive by DIF, result that was statistically significant (P=0.0098) when compared with the positivity obtained by the PCM, which was 11.7% (35/300). The positive samples were submitted to the nested-PCR assay for amplification of fragments of the 18S subunit of rRNA, following sequencing of amplified fragments, allowing the identification of Cryptosporidium andersoni in 11.9% (7/59) and C. parvum in 88.1% (52/59) of the samples. The present results indicate that the DIF was more effective than PCM in the detection of Cryptosporidium in fecal samples from calves. (DIF (PCM calves spp respectively 33x104 x 3 3x104 3.3x10 2 ( 33x105 3x105 1 aliquot semiquantitatively semi quantitatively methods 30 197 19 7 19.7 59/300 59300 59 (59/300 P=0.0098 P00098 P 0 0098 (P=0.0098 117 11 11.7 35/300. 35300 35/300 . 35 (35/300) nestedPCR nested PCR S rRNA 119 9 11.9 7/59 759 (7/59 C 881 88 88.1 52/59 5259 52 (52/59 33x10 3x10 3.3x1 19. 59/30 5930 5 (59/30 P=0.009 P0009 009 (P=0.009 11. 3530 35/30 (35/300 7/5 75 (7/5 8 88. 52/5 525 (52/5 33x1 3x1 3.3x 59/3 593 (59/3 P=0.00 P000 00 (P=0.00 353 35/3 (35/30 7/ (7/ 52/ (52/ 33x 3x 59/ (59/ P=0.0 P00 (P=0.0 35/ (35/3 (7 (52 (59 P=0. P0 (P=0. (35/ (5 P=0 (P=0 (35 P= (P= (3 (P