Resumen Las estrategias para producir leucaena estéril para el estado de Western Australia incluyen herramientas de fitomejoramiento y biotecnología para generar líneas estériles tanto en el nivel tetraploide como triploide. Para los tetraploides, la principal especie objetivo es la leucaena comercial, Leucaena leucocephala, que es bien conocida por su potencial como forraje de alta calidad, productividad y persistencia. Para la producción de líneas estériles, se utilizarán tecnologías de edición genética (CRISPR) para eliminar los genes de floración y desarrollar una L. leucocephala que no florece o crear líneas de L. leucocephala que tengan esterilidad genética masculina o femenina. Para los triploides, la estrategia es cruzar especies tetraploides (L. leucocephala y/o L. diversifolia) con especies diploides para generar híbridos triploides estériles. Los padres diploides incluirán especies que tengan buenos atributos forrajeros, como L. collinsii, L. macrophylla, L. shannonii y L. pulverulenta. Varios de estos cruces triploides ya han sido creados por el Department of Primary Industries and Regional Development (Perth, Western Australia) y serán evaluados en las regiones de Kimberley y Pilbara en Western Australia respecto a su desempeño agronómico y esterilidad. Para la tetraploide L. leucocephala producida por técnicas de CRISPR y que no florece, se requerirán métodos de propagación vegetativa. En cuanto a triploides, una vez generados podrán ser propagados tanto vegetativamente como con base en semilla producida en un vivero de producción de semillas.

Abstract Strategies to breed sterile leucaena for Western Australia include plant breeding and biotechnology tools to generate sterile lines at both the tetraploid and triploid ploidy levels. For tetraploids, the main target species is the commercial Leucaena leucocephala, that is well known for its potential as a high-quality, productive and persistent forage. Gene editing technologies (CRISPR) will be utilized to edit out flowering genes and develop a non-flowering L. leucocephala and/or create male/female genic sterile lines of L. leucocephala. For triploids, the strategy is to cross tetraploid species (L. leucocephala and/or L. diversifolia) with diploid species to generate sterile triploid hybrids. The diploid parents will include species that have good forage attributes such as L. collinsii, L. macrophylla, L. shannonii and L. pulverulenta. Several of these triploid crosses have already been created by the Department of Primary Industries and Regional Development (Perth, Western Australia) and will be evaluated in the Kimberley and Pilbara regions of Western Australia for their agronomic performance and sterility. Vegetative propagation will be required for the tetraploid gene-edited non-flowering L. leucocephala. Triploids can either be vegetatively propagated, once generated, or generated via a seed production nursery.

Um novo método para determinação simultânea de íons paládio, platina e ródio, como quelatos metal-DHBTR foi desenvolvido. Os íons paládio, platina e ródio foram derivatizados (pré-coluna) com 2,4-dihidroxibenzilidenotiorodanina (DHBTR) para formar quelatos coloridos. Os quelatos Pd-DHBTR, Pt-DHBTR e Rh-DHBTR são absorvidos na coluna de enriquecimento, quando injetados e transportados por uma fase móvel composta por solução tampão de ácido acético-acetato de sódio 0,05 mol L-1 (pH 3,5). Após o término do enriquecimento, ao acionar uma válvula de seis vias, os quelatos retidos foram carregados pela fase móvel, para a coluna analítica. A separação dos quelatos na coluna analítica foi satisfatória com acetonitrila 62% (v/v) (contendo solução tampão de ácido acético-acetato de sódio (0,05 mol L-1, pH 3,5) e 0,1% (m/v) de tritonX-100) como fase móvel. Os limites de detecção de paládio, platina e ródio são 3,6 ng L-1, 3,2 ng L-1 e 4,5 ng L-1, respectivamente. Este método foi aplicado para a determinação de paládio, platina e ródio em água, urina e amostras de solo, com bons resultados.

A new method for the simultaneous determination of palladium, platinum and rhodium ions as metal-DHBTR chelates was developed. The palladium, platinum and rhodium ions were pre-column derivatized with 2,4-dihydroxybenzylidenethiorhodanine (DHBTR) to form colored chelates. The Pd-DHBTR, Pt-DHBTR and Rh-DHBTR chelates can be absorbed onto the front of the enrichment column when they were injected into the injector and sent to the enrichment column with a 0.05 mol L-1 sodium acetate-acetic acid buffer solution (pH 3.5) as mobile phase. After the enrichment had finished, by switching the six ports switching valve, the retained chelates were back-flushed by mobile phase and traveling towards the analytical column. These chelates separation on the analytical column was satisfactory with 62% (v/v) acetonitrile (containing 0.05 mol L-1 of pH 3.5 sodium acetate-acetic acid buffer salt and 0.1% (m/v) of tritonX-100) as mobile phase. The Limits of detection of palladium, platinum and rhodium are 3.6 ng L-1, 3.2 ng L-1 and 4.5 ng L-1, respectively. This method was applied to the determination of palladium, platinum and rhodium in water, urine and soil samples with good results.